このプロトコールはあくまでもガイドラインであり、お客様にはご自分のニーズに合わせてご調整願います。
1.染色溶液の調製
(1)貯蔵液の調製:CellTracker Blue CMAC粉末をDMSOに溶解し、濃度が1-25mMの貯蔵液を調製する。
注:未使用の貯蔵液は小分けし、-20℃または-80℃の暗闇で保存し、よって繰り返した冷凍と解凍の循環を避ける。
(2)作業溶液の調製:適切な緩衝液(例えば無血清培地またはPBS)で貯蔵液を希釈し、濃度が0.5-25μMの作業溶液を調製する。
注:実際の条件に合わせて作業溶液の濃度を調整し、需要に応じて調製してください。
2.細胞懸濁染色
(1)懸濁細胞:4℃、1000gで3-5分間遠心分離し、上清を廃棄し、PBSで二回洗浄する。
(2)接着細胞:PBSで二回洗浄し、トリプシンを添加して細胞を消化し、その後は1000gで3-5分間遠心分離する。
(3)1mLのCellTracker Blue CMAC作業溶液を添加し、細胞を再懸濁し、37℃で暗闇で15-45分間培養する。異なる細胞の最適培養時間は異なる可能性があるので、特定の実験需要に応じてご調整願います。
(4)培養後、1000gで5分間遠心分離し、上清を除去し、PBSで1回に5分間、2-3回洗浄する。
(5)細胞を事前加熱した無血清細胞培地またはPBSで再懸濁する。
3.細胞接着染色
(1)接着細胞を無菌のカバーガラスに培養する。
(2)カバーガラスを培地から除去し、過剰の培地を拭き取り、カバーガラスを湿った環境に置く。
(3)100μLの染料作業溶液をカバーガラスの一角から添加し、ゆっくり振動させ、全ての細胞が染料にカバーされるのを確保する。
(4)37℃で、暗闇で15-45分間培養する。異なる細胞の最適培養時間は異なるので、特異的な実験需要に応じてご調整願います。
(5)培養後、染料作業溶液を吸い出し、事前加熱した培地でカバーガラスを2-3回洗浄する。
4.顕微鏡検出:CellTracker Blue CMACの最大励起/発光波長は353/466nmである。
注意事項:
①蛍光色素は消光するので、できる限り光への暴露を避けて、蛍光の消光を遅延させる。
②安全と健康のためには、実験中に白衣と使い捨ての手袋をご装着ください。