Maltose est un disaccharide composé de deux unités de glucose liées par une liaison glycosidique α-1,4[1]. Maltose peut être produit par la dégradation de l'amidon, a une saveur légèrement sucrée (moins sucrée que le saccharose), est soluble dans l'eau et existe sous formes isomères α et β[2]. Les applications de Maltose s'étendent à divers domaines tels que l'alimentaire, la biologie et les produits chimiques d'usage courant : il est principalement utilisé comme édulcorant, sucre de fermentation dans la brassage de la bière, source de carbone pour la culture cellulaire et humectant dans les produits de soins de la peau[3].
In vitro, lorsque des microspores d'orge sont cultivées avec Maltose (40mM) pendant 6-24h, par rapport au saccharose, Maltose présente des taux métaboliques plus lents, une accumulation d'éthanol plus faible, un statut énergétique plus élevé; il favorise la survie cellulaire et stimule l'embryogenèse[4]. Maltose (2.5-112mM) incubé avec des thylakoïdes isolés de pois à -15°C pendant 20h (à des concentrations de 2,5 à 112mM) protège l'activité de la chaîne de transport d'électrons, avec un taux de protection de 93% à 112mM, ce qui est significativement supérieur à l'effet du glucose[5]. Le traitement avec Maltose (12.5mM) aux cellules épithéliales intestinales humaines Caco-2/TC7 pendant 24 h a augmenté la régulation de l'expression du gène de la sucrase-isomaltase (SI) de manière dépendante du temps[6].
In vivo, des rats mâles C57BL/6J nourris pendant 13 semaines avec un régime contenant 7% de Maltose (en poids) présentent une glycémie continue plus élevée, un cholestérol total plasmatique, un cholestérol HDL (lipoprotéines de haute densité) et du niveau de cholestérol non-HDL plus élevés que les rats nourris uniquement avec un régime riche en matières grasses[7]. Chez les rats C57BL/6J normals traités par administration orale de Maltose (2g/kg) après un jeûne nocturne, on observe une élévation significative de la glycémie postprandiale, qui culmine à 30 minutes, et un aire sous la courbe (AUC) élevée pour la glycémie[8].
References:
[1] QUIGLEY G J, SARKO A, MARCHESSAULT R H. Crystal and molecular structure of maltose monohydrate[J]. Journal of the American Chemical Society, 1970, 92(20): 5834-5839.
[2] KHAN R. The chemistry of maltose[M]//Advances in Carbohydrate Chemistry and Biochemistry. Academic Press, 1981, 39: 213-278.
[3] CARLSEN M, NIELSEN J. Influence of carbon source on α-amylase production by Aspergillus oryzae[J]. Applied Microbiology and Biotechnology, 2001, 57(3): 346-349.
[4] SCOTT P, LYNE R L, AP REES T. Metabolism of maltose and sucrose by microspores isolated from barley (Hordeum vulgare L.)[J]. Planta, 1995, 197(3): 435-441.
[5] KAPLAN F, GUY C L. β-Amylase induction and the protective role of maltose during temperature shock[J]. Plant Physiology, 2004, 135(3): 1674-1684.
[6] CHENG M W, CHEGENI M, KIM K H, et al. Different sucrose-isomaltase response of Caco-2 cells to glucose and maltose suggests dietary maltose sensing[J]. Journal of Clinical Biochemistry and Nutrition, 2014, 54(1): 55-60.
[7] SHIBAZAKI N, TANAKA W, SUZUKI Y, et al. Maltose consumption exacerbates high-fat diet-induced overweight and related parameters in mice[J]. Functional Foods in Health and Disease, 2022, 12(11): 680-692.
[8] KIM J I, BAEK H J, HAN D W, et al. Autumn olive (Elaeagnus umbellata Thunb.) berry reduces fasting and postprandial glucose levels in mice[J]. Nutrition Research and Practice, 2019, 13(1): 11-16.