引用文献 (Citations)
12 publications本製品を使用した研究者による文献製品説明 (Description)
Dihydroethidium (Hydroethidine)(DHE)の酸化は、「活性酸素種(ROS)」の細胞産生をモニターする方法として一般的に用いられている。通常、細胞や組織の酸化によるDHEの蛍光の変化は、顕微鏡やフローサイトメトリー、時にはHPLC分析によって測定される。Dihydroethidiumは疎水性の非荷電性化合物で、細胞外膜や細胞内膜を通過することができ、酸化されると正に荷電し、主にDNAリン酸基との静電的相互作用によって、さらに疎水性相互作用を介してDNAにインターカレートすることで細胞内に蓄積する。様々な酸化システムによるその酸化は、細胞や組織における活性酸素産生の蛍光分析にますます使用されるようになっている。ローダミンフィルターで観察されるDihydroethidium由来の赤色蛍光(励起490、発光590 nm)は、2電子酸化産物であるエチジウム化合物の形成に起因し、赤色蛍光は、過酸化水素、ペルオキシナイトライト、ヒドロキシラジカル(フェントン反応により生成)などの酸化剤ではなく、スーパーオキシド生成系(キサンチンオキシダーゼやグルコースオキシダーゼ)により特異的に得られた。
肝組織における活性酸素産生の検出
肝組織における活性酸素産生レベルは、Dihydroethidium(DHE)染色により測定した。各群の肝組織の凍結切片(厚さ5μm)を作製し、DHE(7.5mM)と共に37℃の暗所で30分間インキュベートした。DAPIで染色後、切片を蛍光顕微鏡で観察した。
References:
[1]. Wagner B A, Buettner G R. Quantitative Changes in Dihydroethidium (DHE) Oxidation Products from Isolated Mitochondria While Respiring on Select Substrates and the Effects Mitochondrial Inhibitors Commonly Used in Bioenergetic Profiling[J]. Free Radical Biology and Medicine, 2016, 100: S31.
[2]. Garbett N C, Hammond N B, Graves D E. Influence of the amino substituents in the interaction of ethidium bromide with DNA[J]. Biophysical journal, 2004, 87(6): 3974-3981.
[3]. Benov L, Sztejnberg L, Fridovich I. Critical evaluation of the use of hydroethidine as a measure of superoxide anion radical[J]. Free Radical Biology and Medicine, 1998, 25(7): 826-831.
[4]. Biemond P, Swaak A J G, Beindorff C M, et al. Superoxide-dependent and-independent mechanisms of iron mobilization from ferritin by xanthine oxidase. Implications for oxygen-free-radical-induced tissue destruction during ischaemia and inflammation[J]. Biochemical Journal, 1986, 239(1): 169-173.
[5]. Zheng J, Chen L, Lu T, et al. MSCs ameliorate hepatocellular apoptosis mediated by PINK1-dependent mitophagy in liver ischemia/reperfusion injury through AMPKα activation[J]. Cell death & disease, 2020, 11(4): 1-19.
実験プロトコル (Protocol)
このプランはあくまでガイドラインであり、具体的なニーズに合わせて修正してください。
1. 染色液の調製
(1) 原液の調製:DMSOにDihydroethidiumを溶解し、1~10mMの濃度になるようにストック溶液を調製する。
注意:
①凍結融解を繰り返さないよう、-20℃または-80℃の暗所に保存する;
②本品は酸化しやすい。ストック中はなるべく空気に触れないようにする。特に溶液の場合は窒素またはアルゴン下で保存する必要がある。
(2) 作業溶液を調製する: ストック溶液を適当な緩衝液(無血清培地、PBS 等)で希釈し、1~10μM 濃度の作業溶液を調製する。
注意:作業溶液の濃度は実情に応じて調整し、今すぐ調製してください。
2. 細胞浮遊液の染色
(1)懸濁細胞:1000g、3~5分間、4℃で遠心し、上清を捨て、PBSで5分間ずつ2回洗浄する。
(2)接着細胞:PBSで2回洗浄し、トリプシンを加えて細胞を消化し、消化終了後1000gで3~5分間遠心する。
(3) Dihydroethidium作業溶液を加えて細胞を再懸濁し、室温、暗所で5~30分間インキュベートする。細胞によって最適なインキュベーション時間は異なるので、具体的な実験ニーズに応じて各自で検討してください。
(4) インキュベーション後、1000gで5分間遠心し、上清を除去した後、PBSを加えて2-3回洗浄する。
(5) 細胞をあらかじめ温めた無血清細胞培養液またはPBSに懸濁し、蛍光顕微鏡またはフローサイトメトリーで観察する。
3. 細胞接着染色
(1) 滅菌カバースリップ上で接着細胞を培養する。
(2) カバースリップを培養液から取り出し、余分な培養液を吸引し、カバースリップを加湿器中に置く。
(3) カバースリップの片隅から100μLの色素作業溶液を加え、軽く振ってすべての細胞を均一に色素で覆う。
(4) 室温、暗所で5~30分間インキュベートする。細胞によって最適なインキュベーション時間は異なるので、特定の実験ニーズに応じて各自で検討してください。
(5) インキュベーション後、色素処理液を捨て、あらかじめ温めておいた培養液でカバースリップを2~3回洗浄する。
4. 顕微鏡による検出: Dihydroethidiumの最大励起/発光波長は 518/616nm である。
注意事項
Dihydroethidium は光に非常に弱いので、蛍光消光を遅らせるためにできるだけ光を避けて下さい;
Dihydroethidiumは酸化後にエチジウム化合物を生成し、強い毒性を示します。安全と健康のため、操作時には白衣と使い捨て手袋を着用してください。
製品資料 (Product Documents)
生物学的データ (Biological Data)
化学的性質 (Chemical Properties)
ストック溶液は、-80°Cで保存する場合は6か月以内、-20°Cで保存する場合は1か月以内に使用してください。
溶解性を高めるには、チューブを37°Cに温め、適切な時間超音波処理してください。
計算ツール (Calculators)モル濃度 / 希釈 / 分子量 / 単位変換 / in vivo製剤 / 溶解度
Reviews
Review for Dihydroethidium (Hydroethidine)
- 5 Star100%
- 4 Star0%
- 3 Star0%
- 2 Star0%
- 1 Star0%
