引用文献 (Citations)
42 publications本製品を使用した研究者による文献製品説明 (Description)
H2DCFDA (DCFH-DA)は、酸化還元感受性の蛍光プローブであり、細胞内の反応性酸素種(ROS)レベルを測定するために使用される。細胞内ROS生成レベルを測定する最も一般的な方法は、2′,7′-ジクロロジヒドロフルオレセインジアセテート(H2DCFDA(DCFH-DA))アッセイである。
蛍光性染料H2DCFDA(DCFH-DA)は、ROSの生成を検出するために使用される。通常、細胞内に拡散した後、H2DCFDA(DCFH-DA)は細胞エステラーゼによって脱アセチル化され、次にROSによって2′,7′-ジクロロフルオレセイン(DCF)に酸化される非蛍光化合物に変換されます。TBBPA単独でH2DCFDA(DCFH-DA)をその蛍光生成物DCFに変換する能力を評価するためのin vitro実験は、セルフリーのモデルで行われた。5 μMのH2DCFDA(DCFH-DA)の希釈液と、TBBPA(0.1–100 μM)の濃度を含む96ウェルプレートに、Ca2+およびMg2+を含まないPBSバッファーまたは無血清DMEM/F12またはDMEM/F12に5% FBSを補充したものを100 μLの最終体積で加えた。TBBPAの添加後、30分および60分後に蛍光を測定した。脱アセチル化および酸化されたH2DCFDA(DCFH-DA):DCFの蛍光は、最大励起および放出スペクトルでそれぞれ485および535 nmで検出された。このin vitro研究では、細胞が存在しないPBSバッファー、DMEM/F12、およびDMEM/F12に5%のFBSメディアでのH2DCFDA(DCFH-DA)蛍光へのTBBPAの影響を調べた。得られた結果は、TBBPAがすべての試験濃度でPBSバッファー中のH2DCFDA(DCFH-DA)と相互作用し、蛍光の有意な増加を引き起こしたことを示した。H2DCFDA(DCFH-DA)アッセイは、TBBPAを使用した細胞培養実験には使用できない。結果は、H2DCFDA(DCFH-DA)アッセイを使用してTBBPAによるROS生成に関するデータは、異なる方法を使用して再検討する必要があることを示唆している。
References:
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[3]. Gomes A, Fernandes E, at al. Fluorescence probes used for detection of reactive oxygen species. J Biochem Biophys Methods JLFC (2005) 65:45–80
実験プロトコル (Protocol)
このプランはあくまでガイドラインであり、具体的なニーズに合わせて修正してください。
1. 染色液の調製
(1) 原液の調製:H2DCFDA(DCFH-DA)をDMSOに溶解し、濃度1~10mMのストック溶液を調製する。
注意:未使用のストック液は、凍結融解を繰り返さないよう、-20℃または-80℃で暗所に保存する。
(2) 作業溶液を調製する: ストック液を適当なバッファー(無血清培地や PBS など)で希釈し、1~10μM の濃度に調製する。
注意:作業溶液の濃度は実情に応じて調整し、今すぐ調製してください。
2. 細胞懸濁液の染色
(1) 懸濁細胞: 1000g、3~5分間、4℃で遠心し、上清を捨て、PBSで5分間ずつ2回洗浄する。
(2)接着細胞: PBSで2回洗浄し、トリプシンを加えて細胞を消化し、消化終了後1000gで3~5分間遠心する。
(3) H2DCFDA(DCFH-DA)作業液を加えて細胞を再懸濁し、37℃、暗所で5~30分間インキュベートする。細胞によって最適なインキュベーション時間は異なりますので、各自で実験ニーズに応じて検討してください。
(4) インキュベーション後、1000gで5分間遠心し、上清を除去した後、PBSを加えて2-3回洗浄する。
(5) あらかじめ温めた無血清細胞培養培地またはPBSで細胞をインキュベートする。
3. 固着細胞の染色
(1) 滅菌カバーガラス上に固着細胞を培養する。
(2) 培養液からカバーガラスを取り出し、余分な培養液を吸い取った後、カバーガラスを湿度のある環境に置く。
(3) カバーガラスの一角から100 μLの染色作業溶液を加え、軽く振って全ての細胞に均等に染料する。
(4) 37°Cで暗所にて5-30分間インキュベートする。異なる細胞での最適インキュベーション時間は異なるため、特定の実験ニーズに応じて自分で確認してください。
(5) インキュベーション後、染色作業溶液を廃棄し、予め温めた培養液でカバーガラスを2〜3回洗浄する。
(6) 細胞を予め温めた無血清培養培地またはPBSでインキュベートする。
顕微鏡検出: H2DCFDA(DCFH-DA)の最大励起/放出波長は488/525nmである。
注意事項:
① ジアセテート誘導体の場合、細胞内エステラーゼによる加水分解のために短時間の回復が必要であり、染料が酸化ストレスに反応する。最適な回復時間には幅があり、特定の細胞型ではエステラーゼ活性が非常に低いである。
② 実験刺激を細胞に加える前に、細胞の背景蛍光強度を測定する。
③ フローサイトメトリー分析の場合、染料処理前後で細胞の前方散乱および側方散乱が変わらないことを確認する。細胞のサイズの変化は、薬物治療や毒性反応によって引き起こされる可能性がある。
④ 細胞を含まない実験系で蛍光検出を行うことを推奨する。細胞外エステラーゼやその他の酸化酵素がない場合、蛍光の増加は、瞬時の加水分解、空気酸化、光誘導酸化などの要因に関連する可能性がある。
⑤ 対照群(無治療)の細胞では、細胞内酵素や天然抗酸化物質が酸素フリーラジカルを除去する。色素負荷回復時間後、健康な細胞は低レベルの蛍光信号を示し、実験全体で比較的安定している。
⑥ 蛍光信号の増加(自己酸化による)や減少(細胞内染料の喪失や消光による)が観察されることがある。
⑦ どのような刺激物質や誘導因子も含まない系で、健康な細胞や未処理細胞に突然強い蛍光が見られる場合は、細胞死やその他の酸化イベントを示している可能性がある。
⑧ 蛍光染料には全て消光の問題がある。光を避けて蛍光の消光を遅らせるようにしてください。
⑨ 安全と健康のために、実験中は白衣と使い捨て手袋を着用してください。
製品資料 (Product Documents)
化学的性質 (Chemical Properties)
ストック溶液は、-80°Cで保存する場合は6か月以内、-20°Cで保存する場合は1か月以内に使用してください。
溶解性を高めるには、チューブを37°Cに温め、適切な時間超音波処理してください。
計算ツール (Calculators)モル濃度 / 希釈 / 分子量 / 単位変換 / in vivo製剤 / 溶解度
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Review for H2DCFDA (DCFH-DA)
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