Iohexol |
Catalog No.GC16105
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Iohexol, un milieu de constraste non ionique de faible osmolarité, est un dérivé benzénique tri-iodé d'un poids moléculaire de 821,1Da.
Products are for research use only. Not for human use. We do not sell to patients.
Cas No.: 66108-95-0
Sample solution is provided at 25 µL, 10mM.
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Iohexol, un milieu de constraste non ionique de faible osmolarité, est un dérivé benzénique tri-iodé d'un poids moléculaire de 821,1Da.[1]. Iohexol est utilisé comme marqueur du débit de filtration glomérulaire (GFR) et comme alternative aux radiotraceurs[2].
In vitro,un traitement à Iohexol penant 72 heures a significativement inhibé la viabilité des cellules CC-531 et AML12, avec des valeurs d' IC50 respectives de 46.6mM et 26.8mM[3]. Le traitement des cellules HK-2 avec 100mgI/ml d'Iohexol pendant 24 heures a significativement induit l'apoptose, des dommages mitochondriaux, et a significativement inhibé la migration cellulaire[4]. Le traitement des cellules NRK 52-E avec 150mgI/ml Id'Iohexol pendant 12 heures a entraîné une mort cellulaire massive, provoquant de nombreuses vacuoles rondes dans le cytoplasme[5].
In vivo, un traitement à l'Iohexol via une injection unique de 5μl (300mg/mL) dans la patte gauche de souris pendant 15 minutes a augmenté l'épaisseur et le gonflement de la patte, induisant une réaction anaphylactoïde locale chez les souris[6]. L'injection intrapéritonéale d'une dose unique d' Iohexol (3gI/kg) pendant 24 heures a provoqué des lésions rénales chez les souris C57BL/6, avec vacuolisation du cortex rénal et induction d'un inflammations tubulaire proximale[7].
References:
[1] Seegmiller J C, Eckfeldt J H, Lieske J C. Challenges in measuring glomerular filtration rate: a clinical laboratory perspective[J]. Advances in chronic kidney disease, 2018, 25(1): 84-92.
[2] Brown S C W, O’reilly P H. Iohexol clearance for the determination of glomerular filtration rate in clinical practice: evidence for a new gold standard[J]. The Journal of urology, 1991, 146(3): 675-679.
[3] Melancon M P, Yevich S, Avritscher R, et al. A novel irinotecan-lipiodol nanoemulsion for intravascular administration: pharmacokinetics and biodistribution in the normal and tumor bearing rat liver[J]. Drug delivery, 2021, 28(1): 240-251.
[4] Xiao-Yan G O U, Yong L I, Xiao-Ping F A N. The Role of Mdivi-1 in Reducing Mitochondrial Fission via the NF-κB/JNK/SIRT3 Signaling Pathway in Acute Kidney Injury[J]. Physiological Research, 2025, 74(1): 79.
[5] Jensen H, Doughty R W, Grant D, et al. The effects of the iodinated X-ray contrast media iodixanol, iohexol, iopromide, and ioversol on the rat kidney epithelial cell line NRK 52-E[J]. Renal failure, 2011, 33(4): 426-433.
[6] Yuan F, Zhang C, Sun M, et al. MRGPRX2 mediates immediate-type pseudo-allergic reactions induced by iodine-containing iohexol[J]. Biomedicine & Pharmacotherapy, 2021, 137: 111323.
[7] Lee H T, Jan M, Bae S C, et al. A1 adenosine receptor knockout mice are protected against acute radiocontrast nephropathy in vivo[J]. American Journal of Physiology-Renal Physiology, 2006, 290(6): F1367-F1375.
Protocole d'angiographie par Micro-CT avec rehaussement dynamique
1. Préparation Pré-experimentale
(1) Peser les souris BALB/c (âgées de 8-12 semaines), et calculer la dose d'Iohexol: 25µl/g (=7.5mgI/g).
(2) Préparer le mélange anesthésique, le stériliser avec un filtre 0.2µm, conserver le mélange à l'abri de la lumière à 4°C et l'utiliser immédiatement après préparation.
(3) Ajouter 5ml d'Iohexol (300mgI/ml) à 5ml de solution saline stérile et mélanger pour obtenir 10ml de solution de travail à 150mI/ml, stériliser avec un filtre 0,2µm, conserver à l'abri de la lumière et utiliser immédiatement après préparation.
(4) Aspirer l'Iohexol dans une seringue de 1ml, chasser les bulles d'air et fixer la seringue sur la pompe à injection. Régler le débit: volume total injecté (µl) = 25µl × poids corporel (g). Temps d'injection = 45s → débit (µl/s) = volume total/45.
(5) Fixer la souris sur un tapis chauffant (37°C) et surveiller la température rectale en temps réel pour la maintenir entre 36.5 et 37.5°C.
2. Injection intraveneuse
(1) Nettoyer le tiers postérieur de la queue de la souris avec une compresse d'alcool et utiliser une lampe infrarouge pour aider à dilater la veine caudale.
(2)Insérer le cathéter, confirmer le reflux sanguin et le fixer; connecter l'autre l'extrémité du cathéter au tube prolongateur de la pompe à injection rempli d'Iohexol.
(3) Injecter lentement 20µl de NaCl à 0.9% pour vérifier que la voie est perméable sans fuite.
3. Procédure de balayage dynamique avec contraste
(1) Acquérir d'abord la séquence de base "pré-contraste" (paramètres exemple: 80kV; 500µA; projection à 360 degrés; 10min).
(2) Démarrer le balayage et déclencher simultanément la pompe à injection; commencer immédiatement le premier tour de balayage "post-contraste" après la fin de l'injection (45s).
(3) Répéter le balayage post-contrate toutes les 50s pour un total de 5 périodes; le processus entier dure environ 4.5min.
(4) Après le balayage, retirer lentement l'aiguille, appliquer une pression locale pour arrêter le saignement pendant 30 s; placer les souris sur le tapis chauffant pour récupération, et les remettre dans la cage une fois le réflexe de redressement revenu.
4. Observation Postoperatoire
(1) Observe la respiration, la couleur de la peau et l'activité à 0, 30 et 60min, noter toute réaction indésirable (convulsions, depression respiratoire, etc.).
(2) Fournir de l'eau glucosée à 5% dans les 24h pour favoriser l' excrétion de l'iode.
(3) Si plusieurs balayages avec contraste sont nécessaire, l'intervalle doit être ≥ 72h, et surveiller la créatinine sérique pour évaluer la fonction rénale.
5. Précautions
(1) Iohexol est un agent de contraste non ionique de faible osmolarité et peut être conservé à température ambiante; vérifier la présence de cristaux avant utilisation, et si présents, dissoudre Iohexol dans un bain-marie à 37°C.
(2)La profondeur de l'anesthésie doit être telle qu'il n'y ait pas de réflexe de retrait losque la patte est pincée; une anesthésie trop profonde peut provoquer une dépression respiratoire, et une anesthésie trop légère peut entraîner des artéfacts de mouvement.
(3) Si la période expérimentale est > 1h, administrer 0.3ml de solution saline tiède par voie intrapéritonéale toutes les 20 min pour prévenir la déshydratation et l'hypotension.
References:
[1] Yan D, Zhang Z, Luo Q, et al. A novel mouse segmentation method based on dynamic contrast enhanced micro-CT images[J]. PLoS One, 2017, 12(1): e0169424.
| Cas No. | 66108-95-0 | SDF | |
| Chemical Name | (1Z,3Z)-N'1,N'3-bis(2,3-dihydroxypropyl)-5-(N-(2,3-dihydroxypropyl)acetamido)-2,4,6-triiodoisophthalimidic acid | ||
| Canonical SMILES | CC(N(C1=C(I)C(/C(O)=N/CC(O)CO)=C(I)C(/C(O)=N/CC(O)CO)=C1I)CC(O)CO)=O | ||
| Formula | C19H26I3N3O9 | M.Wt | 821.14 |
| Solubility | ≥ 31.85mg/mL in DMSO | Storage | 4°C, protect from light |
| General tips | Please select the appropriate solvent to prepare the stock solution according to the
solubility of the product in different solvents; once the solution is prepared, please store it in
separate packages to avoid product failure caused by repeated freezing and thawing.Storage method
and period of the stock solution: When stored at -80°C, please use it within 6 months; when stored
at -20°C, please use it within 1 month. To increase solubility, heat the tube to 37°C and then oscillate in an ultrasonic bath for some time. |
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| Shipping Condition | Evaluation sample solution: shipped with blue ice. All other sizes available: with RT, or with Blue Ice upon request. | ||
| Prepare stock solution | |||
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1 mg | 5 mg | 10 mg |
| 1 mM | 1.2178 mL | 6.0891 mL | 12.1782 mL |
| 5 mM | 243.6 μL | 1.2178 mL | 2.4356 mL |
| 10 mM | 121.8 μL | 608.9 μL | 1.2178 mL |
Step 1: Enter information below (Recommended: An additional animal making an allowance for loss during the experiment)
g
μL
Step 2: Enter the in vivo formulation (This is only the calculator, not formulation. Please contact us first if there is no in vivo formulation at the solubility Section.)
Calculation results:
Working concentration: mg/ml;
Method for preparing DMSO master liquid: mg drug pre-dissolved in μL DMSO ( Master liquid concentration mg/mL, Please contact us first if the concentration exceeds the DMSO solubility of the batch of drug. )
Method for preparing in vivo formulation: Take μL DMSO master liquid, next addμL PEG300, mix and clarify, next addμL Tween 80, mix and clarify, next add μL saline, mix and clarify.
Method for preparing in vivo formulation: Take μL DMSO master liquid, next add μL Corn oil, mix and clarify.
Note: 1. Please make sure the liquid is clear before adding the next solvent.
2. Be sure to add the solvent(s) in order. You must ensure that the solution obtained, in the previous addition, is a clear solution before proceeding to add the next solvent. Physical methods such as vortex, ultrasound or hot water bath can be used to aid dissolving.
3. All of the above co-solvents are available for purchase on the GlpBio website.
Quality Control & SDS
- View current batch:
- Purity: >98.00% Appearance: A solid
- COA (Certificate of Analysis)
- SDS (Safety Data Sheet)
- Datasheet
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