引用文献 (Citations)
1 publications本製品を使用した研究者による文献製品説明 (Description)
Gap 27はコネキシン43(Cx43)からのペプチド(Ser-Arg-Pro-Thr-Glu-Lys-Thr-Ile-Phe-Ile-Ile)であり、選択的なギャップジャンクション遮断剤である[1, 2]。Gap 27は、Cx43の構造の一部を模倣することで、このタンパク質に特異的に作用し、よってCx43に媒介された細胞間のコミュニケーションを阻害する[3]。ギャップジャンクションは、隣接の細胞膜にあるチャネル構造であり、小分子を細胞間で直接移動させ、細胞グループ活動の協調には不可欠である[4]。
体外で、ウシ骨切片で培養したラットの破骨細胞をGap 27 (500µM)で48時間処理した結果、破骨細胞の生存率、TRAP陽性単核と多核ラット破骨細胞の数を著しく減らした[5]。Gap 27 (0.1mM)で初代ヒト角質上皮細胞(HCEC)を処理した結果、体外でHCECの傷口の閉鎖を増強した[6]。
体内で、動静脈瘻モデル(AV-Shunt)のラットで、Gap 27 (1µg/kg)で浸透圧マイクロポンプを4週間処理した結果、ラットで心臓機能悪化の進行を著しく遅延させ、心臓機能を著しく改善した[7]。
References:
[1] De Vuyst E, Boengler K, Antoons G, et al. Pharmacological modulation of connexin‐formed channels in cardiac pathophysiology[J]. British journal of pharmacology, 2011, 163(3): 469-483.
[2] Sathiyanadan K, Alonso F, Domingos-Pereira S, et al. Targeting endothelial Connexin37 reduces angiogenesis and decreases tumor growth[J]. International journal of molecular sciences, 2022, 23(6): 2930.
[3] Ribeiro-Rodrigues T M, Martins-Marques T, Morel S, et al. Role of connexin 43 in different forms of intercellular communication–gap junctions, extracellular vesicles and tunnelling nanotubes[J]. Journal of cell science, 2017, 130(21): 3619-3630.
[4] Maeda S, Tsukihara T. Structure of the gap junction channel and its implications for its biological functions[J]. Cellular and Molecular Life Sciences, 2011, 68(7): 1115-1129.
[5] Ilvesaro J, Tavi P, Tuukkanen J. Connexin-mimetic peptide Gap 27 decreases osteoclastic activity[J]. BMC musculoskeletal disorders, 2001, 2(1): 10.
[6] Elbadawy H M, Mirabelli P, Xeroudaki M, et al. Effect of connexin 43 inhibition by the mimetic peptide Gap27 on corneal wound healing, inflammation and neovascularization[J]. British journal of pharmacology, 2016, 173(19): 2880-2893.
[7] Lucero C M, Andrade D C, Toledo C, et al. Cardiac remodeling and arrhythmogenesis are ameliorated by administration of Cx43 mimetic peptide Gap27 in heart failure rats[J]. Scientific Reports, 2020, 10(1): 6878.
実験プロトコル (Protocol)
| 細胞実験[1]: | |
細胞株 | 破骨細胞 |
準備方法 | 1または2日齢のSprague-Dawleyラットの新生児の長骨から機械的に採取した破骨細胞を、超音波処理したウシ皮質骨スライス(0.5cm2)に接着させた。30分後、接着されたなかった細胞を洗い流し、骨スライスにある残りの細胞を三つのグループ(対照、heptanolとGap 27)で培養した。対照群を、20mMのHepes緩衝液、0.84gの重炭酸ナトリウム/リットル、2mMのL-グルタミン酸、100 IUのペニシリン/ml、100µgのストレプトマイシン/mlと7%の熱不活性化のウシ胎児血清(FCS)を含有するDMEM(Dulbecco's修飾Eagle's培地)で培養し、培地を以下DMEM-FCSと呼ぶ。DMEM-FCSで、heptanolグループを培地で、0.15%のエタノールと3mMのheptanolと共にした。骨細胞の三番目のグループ、Gap 27ペプチドのグループを、DMEM-FCSで、500µMの濃度で、Gap 27ペプチドとともに培養した。三つ全てのグループで、細胞を48時間培養し、その後、室温で、PBSの中の、新鮮に製造された、または冷凍保存された3%のパラホルムアルデヒド(PFA)と2%の蔗糖で、細胞と骨スライスを10分間固定することで、培養を中止にした。メーカーの指示に従い、TRAPキットを使い、広く承認されたいる破骨細胞のマーカーである酒石酸耐性の酸性ホスファターゼ(TRAP)で細胞を染色した。 |
反応条件 | 500µM;48時間 |
アプリケーション | Gap 27は、ウシ骨切片で培養されたTRAP陽性単核と多核ラット破骨細胞の数を著しく減らした。 |
| 動物実験 [2]: | |
動物モデル | Sprague-Dawleyラット |
準備方法 | 成体した雄のラットで、動静脈瘻モデル(AV-Shunt)を使い、容量負荷により高拍出性心不全を誘発した。AV-Shunt手術の4週間後、Cx43模倣ペプチドGap 27 (1µg/kg)またはスクランブルペプチドを、浸透圧ミニポンプ(AV-ShuntGap 27またはAV-ShuntScr)を通じて4週間投与した。AV-Shunt手術の8週間後に、心臓の体積、不整脈、機能とリモデリングを測定した。 |
投与形態 | 1µg/kg;4週間;浸透圧ミニポンプ |
アプリケーション | Gap 27の処理は、ラットで心臓機能悪化の進行を著しく遅延させ、心室内圧容積ループ測定では、心臓機能が著しく改善された。 |
References: | |
製品資料 (Product Documents)
化学的性質 (Chemical Properties)
ストック溶液は、-80°Cで保存する場合は6か月以内、-20°Cで保存する場合は1か月以内に使用してください。
溶解性を高めるには、チューブを37°Cに温め、適切な時間超音波処理してください。
計算ツール (Calculators)モル濃度 / 希釈 / 分子量 / 単位変換 / in vivo製剤 / 溶解度
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