T-2 Toxin (Synonyms: Fusariotoxin T2, Insariotoxin, Mycotoxin T2, NSC 138780) |
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Catalog No.GC44981
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T-2 Toxin est l'une des mycotoxines trichothécènes les plus courantes et les plus puissantes, produite principalement par des espèces de Fusarium dans les grains et les aliments pour animaux. T-2 Toxin est une toxine trichothécène non-macrocyclique de type A, et son mécanisme toxique implique l'inhibition de la synthèse protéique par liaison à la peptidyl transférase.
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Cas No.: 21259-20-1
Sample solution is provided at 25 µL, 10mM.
T-2 Toxin est l'une des mycotoxines trichothécènes les plus courantes et les plus puissantes, produite principalement par des espèces de Fusarium dans les grains et les aliments pour animaux[1]. T-2 Toxin est une toxine trichothécène non-macrocyclique de type A, et son mécanisme toxique implique l'inhibition de la synthèse protéique par liaison à la peptidyl transférase[2]. T-2 Toxin peut être métabolisé chez les animaux en produits d'hydrolyse tels que HT-2 Toxin et T-2 triol[3]. T-2 Toxin peut traverser la barrière hémato-encéphalique et s'accumuler dans le système nerveux central, exerçant ainsi une neurotoxicité significative[4].
Le traitement in vitro avec T-2 Toxin (0.25-1µM) aux cardiomyocytes primaires de raton nouveau-né pendant 24h a induit des lésions des cardiomyocytes et inhibé la viabilité cellulaire de manière dose-dépendante[5]. Le traitement avec T-2 Toxin (1-100nM) aux cellules de la granulosa ovarienne de rat pendant 24h a inhibé la croissance cellulaire, induit l'apoptose, provoqué l'accumulation d'espèces réactives de l'oxygène (ERO) et réduit le potentiel de membrane mitochondrial de manière dose-dépendante[6].
Le traitement in vivo avec T-2 Toxin (5.94mg/kg) aux rats via l'administration transdermique ou T-2 Toxin (1.57mg/kg) via injection sous-cutanée pendant 0 à 7 jours a toutes deux augmenté la production d'espèces réactives de l'oxygène, la déplétion de glutathion, la peroxydation lipidique et la teneur en carbonyles protéiques dans le tissu cérébral de rat de manière temps-dépendante. L'administration transdermique a significativement augmenté l'expression de la superoxyde dismutase, tandis que l'administration sous-cutanée a considérablement augmenté l'expression de la glutathion réductase et de la glutathion peroxydase[7].
References:
[1] Janik E, Niemcewicz M, Podogrocki M, et al. T-2 Toxin—The most toxic trichothecene mycotoxin: Metabolism, toxicity, and decontamination strategies[J]. Molecules, 2021, 26(22): 6868.
[2] Meneely J, Greer B, Kolawole O, et al. T-2 and HT-2 Toxins: toxicity, occurrence and analysis: a review[J]. Toxins, 2023, 15(8): 481.
[3] Li Y, Wang Z, Beier R C, et al. T-2 Toxin, a trichothecene mycotoxin: review of toxicity, metabolism, and analytical methods[J]. Journal of agricultural and food chemistry, 2011, 59(8): 3441-3453.
[4] Wang Y, Wang B, Wang P, et al. Review of neurotoxicity of T-2 Toxin[J]. Mycotoxin research, 2024, 40(1): 85-95.
[5] Xu J, Pan S, Gan F, et al. Selenium deficiency aggravates T-2 Toxin-induced injury of primary neonatal rat cardiomyocytes through ER stress[J]. Chemico-biological interactions, 2018, 285: 96-105.
[6] Wu J, Jing L, Yuan H, et al. T-2 Toxin induces apoptosis in ovarian granulosa cells of rats through reactive oxygen species-mediated mitochondrial pathway[J]. Toxicology letters, 2011, 202(3): 168-177.
[7] Chaudhary M, Rao P V L. Brain oxidative stress after dermal and subcutaneous exposure of T-2 Toxin in mice[J]. Food and Chemical Toxicology, 2010, 48(12): 3436-3442.
| Expériences cellulaires [1]: | |
Lignées cellulaires | Cardiomyocytes |
Méthode de préparation | Les cardiomyocytes ont été cultivés dans un milieu DMEM contenant 2µM de sélénométhionine, puis exposés à différentes concentrations de T-2 Toxin (0.125, 0.25, 0.5, 1μM) pendant 24h. Les cellules cultivées dans un milieu DMEM contenant 2µM de sélénométhionine ont servi de groupe témoin. Les effets de T-2 Toxin sur la viabilité des cardiomyocytes et les lésions cellulaires ont été évalués par les dosages MTT et LDH. |
Conditions de réaction | 0.125, 0.25, 0.5, 1μM; 24h |
Domaines d'application | La viabilité cellulaire a été significativement inhibée et les lésions cellulaires ont augmenté après traitement avec 0,25, 0,5 et 1µM de T-2 Toxin. |
| Expériences animales [2]: | |
Modèles animaux | Rats féminins albinos suisses |
Méthode de préparation | T-2 Toxin a été dissous dans une quantité minimale de DMSO puis diluée dans PBS avant utilisation. Les rats ont été logés quatre par cage et ont été autorisés à s'acclimater pendant 7 jours avant l'administration. La veille de l'exposition percutanée à T-2 Toxin, le poil du dos des animaux a été rasé soigneusement à l'aide d'une paire de ciseaux. Par voie percutanée (p.c), la solution de toxine diluée a été étalée uniformément sur le dos des animaux sur une zone circulaire de 1,5cm de diamètre, à l'aide d'une seringue hermétique au gaz. L'injection sous-cutanée a été effectuée à l'aide de la seringue hermétique au gaz sur le dos des animaux. Pour l'étude de la cinétique temporelle, les animaux ont été divisés en quatre groupes de six animaux chacun point temporel (0, 1, 3 et 7 jours) par voies p:c. et sous-cutanée (s.c). Les rats ont été maintenus dans les groupes distincts à 0 (témoin), 1, 3 et 7 jours après l'exposition. Les rats ont reçu 1 LD50 de T-2 Toxin par voie p.c. (5.94mg/kg de masse corporelle) ou s.c. (1.57mg/kg de masse corporelle). Les rats témoins ont reçu un volume équivalent de DMSO par les voies respectives. |
Forme de dosage | 5.94mg/kg、1.57mg/kg; 0, 1, 3, 7 jours; p.c.、s.c. |
Domaines d'application | Les animaux traités avec T-2 Toxin ont présenté une augmentation dépendante du temps de la production d'espèces réactives de l'oxygène, de l'épuissement du glutathion, de la peroxydation lipidique et de la teneur en carbonyles protéiques dans le cerveau, quel que soit le mode d'exposition. Le profil d'expression génique des enzymes antioxydantes a révélé une augmentation significative de la superoxyde dismutase et de la catalase par voie percutanée, ainsi que de la glutathion réductase et de la glutathion peroxydase par voie sous-cutanée. L'analyse par immunobuvardage des enzymes antioxydantes était corrélée au profil d'expression génique. |
References: | |
| Cas No. | 21259-20-1 | SDF | |
| Synonymes | Fusariotoxin T2, Insariotoxin, Mycotoxin T2, NSC 138780 | ||
| Canonical SMILES | CC1=C[C@]2([H])[C@]([C@]3(C)[C@@]4(OC4)[C@]([C@H](O)[C@H]3OC(C)=O)([H])O2)(COC(C)=O)C[C@@H]1OC(CC(C)C)=O | ||
| Formula | C24H34O9 | M.Wt | 466.6 |
| Solubility | DMF: 30 mg/ml,DMSO: 30 mg/ml,DMSO:PBS(pH7.2) (1:1): 0.5 mg/ml,Ethanol: 20 mg/ml | Storage | Store at -20°C, protect from light |
| General tips | Please select the appropriate solvent to prepare the stock solution according to the
solubility of the product in different solvents; once the solution is prepared, please store it in
separate packages to avoid product failure caused by repeated freezing and thawing.Storage method
and period of the stock solution: When stored at -80°C, please use it within 6 months; when stored
at -20°C, please use it within 1 month. To increase solubility, heat the tube to 37°C and then oscillate in an ultrasonic bath for some time. |
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| Shipping Condition | Evaluation sample solution: shipped with blue ice. All other sizes available: with RT, or with Blue Ice upon request. | ||
| Prepare stock solution | |||
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1 mg | 5 mg | 10 mg |
| 1 mM | 2.1432 mL | 10.7158 mL | 21.4316 mL |
| 5 mM | 428.6 μL | 2.1432 mL | 4.2863 mL |
| 10 mM | 214.3 μL | 1.0716 mL | 2.1432 mL |
Step 1: Enter information below (Recommended: An additional animal making an allowance for loss during the experiment)
Step 2: Enter the in vivo formulation (This is only the calculator, not formulation. Please contact us first if there is no in vivo formulation at the solubility Section.)
Calculation results:
Working concentration: mg/ml;
Method for preparing DMSO master liquid: mg drug pre-dissolved in μL DMSO ( Master liquid concentration mg/mL, Please contact us first if the concentration exceeds the DMSO solubility of the batch of drug. )
Method for preparing in vivo formulation: Take μL DMSO master liquid, next addμL PEG300, mix and clarify, next addμL Tween 80, mix and clarify, next add μL saline, mix and clarify.
Method for preparing in vivo formulation: Take μL DMSO master liquid, next add μL Corn oil, mix and clarify.
Note: 1. Please make sure the liquid is clear before adding the next solvent.
2. Be sure to add the solvent(s) in order. You must ensure that the solution obtained, in the previous addition, is a clear solution before proceeding to add the next solvent. Physical methods such as vortex, ultrasound or hot water bath can be used to aid dissolving.
3. All of the above co-solvents are available for purchase on the GlpBio website.
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