このプランはあくまでもガイドであり、ご自分のニーズに合わせてご調整ください。
1.Acridine Orangeの調製
(1)染色溶液:DMSOでAcridine Orange粉末を1mg/mLに溶解する。未使用の貯蔵液を小分けし、−20°Cまたは−4°C、暗所で保存する(窒素下での保存を推奨);繰り返した冷凍-解凍循環を避けるべき。
(2)作業溶液:貯蔵液を適切な緩衝液(無血清培地、HBSSまたはPBS)で0.5–20μg/mLに希釈する。各実験に対し新鮮なものを調製し、最適濃度になるまで滴定する。
2.懸濁細胞のDNA/RNA染色
(1)細胞を収穫し;氷の上で、~0.2mLのオリジナル懸濁液を2–5mLのチューブに入れる。
(2)0.4mLの氷冷透過緩衝液をゆっくり添加し;氷に約15秒静置する。
(3)1.2mLの氷冷Acridine Orange作業溶液をゆっくり添加する;暗所で、氷の上で2-15分間培養する。
(4)フローサイトメトリーで速やかに分析する:488nmで励起;530nmでdsDNAの緑色の蛍光、640nmでRNA/ssDNAの赤色の発光を収集する(AO核酸複合体は488/650nmでピークに達する)。
3.接着細胞の染色(氷の上)
(1)無菌カバーグラスで細胞を培養する。
(2)培地を除去し、余分なものをブロットし、カバーグラスを湿ったチャンバーに保存する。
(3)100μLのAcridine Orange作業溶液を一角に添加し;ゆっくり傾けてすべての細胞をカバーさせる。暗所で、氷の上で2-15分間培養する。
(4)染色液を吸い出し、新鮮な培地でカバーグラスを2-3回すすぎ、蛍光顕微鏡で観察する。
4.検出
(1)蛍光顕微鏡またはフローサイトメーター:488nmで励起;530nm (dsDNA)で緑色の蛍光を獲得し、640nm (RNA/ssDNA)でオレンジ色の蛍光を獲得する。
注意事項:
(1)固定後、細胞を染色する必要がある場合は、固定に70%のエタノールを使用し、氷で2時間以上固定し、その後は事前冷却のPBSで1-2回すすぎ、すべてのエタノールを除去し、染色については上記のステップに従い行うことを推奨する:
(2)蛍光染料で消光問題があるため、光から避けて、蛍光の消光を遅らせてください;
(3)安全と健康のため、実験時は白衣と使い捨ての手袋を装着してください。
References: [1] Hu P, Wang J, Qing Y, et al. FV-429 induces autophagy blockage and lysosome-dependent cell death of T-cell malignancies via lysosomal dysregulation. Cell Death Dis. 2021 Jan 13;12(1):80. |