TSQ |
カタログ番号GC66458
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TSQは細胞内の亜鉛タンパク質を現像化する蛍光プローブであり、最大の励起/発光波長は約360nm/470nmである。
Products are for research use only. Not for human use. We do not sell to patients.
Cas No.: 109628-27-5
Sample solution is provided at 25 µL, 10mM.
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TSQは細胞内の亜鉛タンパク質を現像化する蛍光プローブであり、最大の励起/発光波長は約360nm/470nmである[1]。TSQは、脳における遊離Zn2の正確な特定に応用されている[2]。脂質二分子膜へ強い結合特性を示すと同時に、TSQは、人工膜と精子細胞内のZn2+の評価に対する効果的なツールとして機能している[3]。TSQは、乳癌細胞（MCF7、MDA-MB-231、T47DとMCF10A細胞）における遊離亜鉛の検出に使われ、亜鉛の分布と摂取を測定する[4]。TSQは組織切片の組織化学染色に使われ、神経線維腫における亜鉛含有（グルタミン酸作動性）神経終末の位置を示せる[5]。
References:
[1] Meeusen J W, Tomasiewicz H, Nowakowski A, et al. TSQ (6-methoxy-8-p-toluenesulfonamido-quinoline), a common fluorescent sensor for cellular zinc, images zinc proteins[J]. Inorganic chemistry, 2011, 50(16): 7563-7573.
[2] Frederickson C J, Kasarskis E J, Ringo D, et al. A quinoline fluorescence method for visualizing and assaying the histochemically reactive zinc (bouton zinc) in the brain[J]. Journal of neuroscience methods, 1987, 20(2): 91-103.
[3] Andrews J C, Nolan J P, Hammerstedt R H, et al. Characterization of N‐(6‐methoxy‐8‐quinolyl)‐p‐toluenesulfonamide for the detection of zinc in living sperm cells[J]. Cytometry: The Journal of the International Society for Analytical Cytology, 1995, 21(2): 153-159.
[4] Hübner C, Keil C, Jürgensen A, et al. Comparison of three low-molecular-weight fluorescent probes for measuring free zinc levels in cultured mammary cells[J]. Nutrients, 2023, 15(8): 1873.
[5] Frederickson C J, Suh S W, Silva D, et al. Importance of zinc in the central nervous system: the zinc-containing neuron[J]. The Journal of nutrition, 2000, 130(5): 1471S-1483S.
このプロトコールはガイドラインのみを提供し、ご自分のニーズに合わせえご調整ください。
1.染色溶液の調製
(1)貯蔵液の調製：
DMSOにTSQを溶解し、よって濃度が1-5mmol/Lの貯蔵液を調製する。
注：未使用の貯蔵液をアリコートし、-20°Cまたは-80°Cで保存し。光から避ける。繰り返した冷凍-解凍循環を避ける。
(2)作業溶液の調製：
適切な緩衝液（例えば無血清培地またはPBS）で貯蔵液を希釈し。濃度が0.1-100μmol/Lの作業溶液を調製する。
注：需要に応じて作業溶液の濃度を調整してください。使用前に新鮮に調製してください。
2.懸濁細胞の染色
(1)懸濁細胞：
4°C、1000×gで3-5分間遠心分離し、上清を廃棄し、PBSで2回洗浄する（毎回5分間）。
(2)接着細胞：
PBSで二回洗浄し、トリプシンで細胞を消化する。その後、1000×gで3-5分間遠心分離する。
(3)1mLのTSQ作業溶液で細胞を再懸濁し、暗所、37℃で約30分間培養する。
注：最適の培養時間は細胞の種類により異なる。実験の需要に基づき、最適化してください。
(4)培養後、1000×gで5分間遠心分離し、上清を廃棄し、PBSで2-3回洗浄する（毎回5分間）。
(5)細胞を、事前加温の無血清培地またはPBSで再懸濁し、蛍光顕微鏡またはフローサイトメトリーで観察する。
3.接着細胞の染色
(1)接着細胞を無菌カバーガラスで培養する。
(2)カバーガラスを培地から除去し、余分の培地を吸引し、カバーガラスを湿った環境に置く。
(3)100μLの染料作業溶液をカバーガラスの一角から添加し、ゆっくり傾けて、溶液が全ての細胞を均一にカバーするのを確認する。
(4)暗所で、37℃で30分間培養する。
注：最適の培養時間は細胞の種類により異なる。実験の需要に基づき、最適化してください。
(5)培養後、染料作業溶液を吸引除去し、事前加温した培地でカバーガラスを2-3回洗浄する。
4.顕微鏡の検出
TSQの最大励起/発光波長は約360nm/470nmである。
Reference:
[1] Meeusen J W, Tomasiewicz H, Nowakowski A, et al. TSQ (6-methoxy-8-p-toluenesulfonamido-quinoline), a common fluorescent sensor for cellular zinc, images zinc proteins[J]. Inorganic chemistry, 2011, 50(16): 7563-7573.
| Cas No. | 109628-27-5 | SDF | |
| Formula | C17H16N2O3S | M.Wt | 328.39 |
| 溶解度 | DMSO : ≥ 100 mg/mL (304.52 mM) | Storage | 4°C, protect from light |
| General tips | Please select the appropriate solvent to prepare the stock solution according to the
solubility of the product in different solvents; once the solution is prepared, please store it in
separate packages to avoid product failure caused by repeated freezing and thawing.Storage method
and period of the stock solution: When stored at -80°C, please use it within 6 months; when stored
at -20°C, please use it within 1 month. To increase solubility, heat the tube to 37°C and then oscillate in an ultrasonic bath for some time. |
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| Shipping Condition | Evaluation sample solution: shipped with blue ice. All other sizes available: with RT, or with Blue Ice upon request. | ||
| Prepare stock solution | |||
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1 mg | 5 mg | 10 mg |
| 1 mM | 3.0452 mL | 15.2258 mL | 30.4516 mL |
| 5 mM | 609 μL | 3.0452 mL | 6.0903 mL |
| 10 mM | 304.5 μL | 1.5226 mL | 3.0452 mL |
Step 1: Enter information below (Recommended: An additional animal making an allowance for loss during the experiment)
g
μL
Step 2: Enter the in vivo formulation (This is only the calculator, not formulation. Please contact us first if there is no in vivo formulation at the solubility Section.)
Calculation results:
Working concentration: mg/ml;
Method for preparing DMSO master liquid: mg drug pre-dissolved in μL DMSO ( Master liquid concentration mg/mL, Please contact us first if the concentration exceeds the DMSO solubility of the batch of drug. )
Method for preparing in vivo formulation: Take μL DMSO master liquid, next addμL PEG300, mix and clarify, next addμL Tween 80, mix and clarify, next add μL saline, mix and clarify.
Method for preparing in vivo formulation: Take μL DMSO master liquid, next add μL Corn oil, mix and clarify.
Note: 1. Please make sure the liquid is clear before adding the next solvent.
2. Be sure to add the solvent(s) in order. You must ensure that the solution obtained, in the previous addition, is a clear solution before proceeding to add the next solvent. Physical methods such as vortex, ultrasound or hot water bath can be used to aid dissolving.
3. All of the above co-solvents are available for purchase on the GlpBio website.
Quality Control & SDS
- View current batch:
- Purity: >98.00% Appearance: A solid
- COA (Certificate of Analysis)
- SDS (Safety Data Sheet)
- Datasheet
Average Rating: 5 (Based on Reviews and 30 reference(s) in Google Scholar.)